ÍNDICE EXPLORATÓRIO DE RIGOR MORTIS EM TILÁPIA-DO-NILO E BAGRE-AFRICANO
DOI:
https://doi.org/10.18817/repesca.v17i1.4688Palavras-chave:
Oreochromis niloticus, Clarias gariepinus, queda caudal, abate de peixes, bem-estar animal na aquicultura, qualidade pós-abateResumo
Este estudo descreve um protocolo padronizado de monitoramento do índice de rigor mortis (IRM) e o aplica de forma exploratória em duas sessões experimentais de espécie única, uma com tilápia-do-nilo (n = 4) e outra com bagre-africano (n = 5); como espécie, lote, dia e sessão não foram replicados de forma independente, o contraste entre sessões aqui relatado não isola um efeito de espécie. Após secção da medula espinhal, os peixes permaneceram à temperatura ambiente, sem refrigeração, e a distância caudal foi medida a cada 20 min durante 520 min analíticos. A área sob a curva (ASC) foi o desfecho primário e as comparações entre sessões foram exploratórias. A ASC foi de 386,98 ± 67,76 %·h na sessão com tilápia e 106,20 ± 89,07 %·h na sessão com bagre (diferença 280,78 %·h; IC95%: 184,52–363,91; p = 0,0159). O padrão observado foi compatível com a hipótese exploratória de maior resposta integrada de rigor na sessão com tilápia e maior heterogeneidade individual na sessão com bagre. Como espécie, lote, dia e sessão não foram replicados independentemente, o contraste não representa efeito isolado de espécie.
Referências
ADOGA, I. J., JOSEPH, E., & SAMUEL, E. F. (2010). Studies on the post-mortem changes in African catfish (Clarias anguillaris) during ice-storage. New York Science Journal, 3(6), 96–101.
ALMEIDA, N. M., BATISTA, G. M., KODAIRA, M., VAL, L. A., & LESSI, E. (2005). Determinação do índice de rigor-mortis e sua relação com a degradação dos nucleotídeos em tambaqui (Colossoma macropomum), de piscicultura e conservados em gelo. Ciência Rural, 35(3), 698–704. https://doi.org/10.1590/S0103-84782005000300034
BITO, M., YAMADA, K., MIKUMO, Y., & AMANO, K. (1983). Studies on rigor mortis of fish: I. Difference in the mode of rigor mortis among some varieties of fish by modified Cutting's method. Bulletin of the Tokai Regional Fisheries Research Laboratory, 109, 89–96.
BRIJS, J., SUNDELL, E., HJELMSTEDT, P., BERG, C., SENČIĆ, I., SANDBLOM, E., AXELSSON, M., LINES, J., BOUWSEMA, J., ELLIS, M., SAXER, A., & GRÄNS, A. (2021). Humane slaughter of African sharptooth catfish (Clarias gariepinus): Effects of various stunning methods on brain function. Aquaculture, 531, 735887. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2020.735887
CAI, J., LI, X., & ZHOU, X. (2025). Top 10 species groups in global aquaculture 2023. World Aquaculture Performance Indicators (WAPI), Food and Agriculture Organization of the United Nations. https://openknowledge.fao.org/handle/20.500.14283/cd5734en
CASTILLO-YÁÑEZ, F. J., JIMÉNEZ-RUÍZ, E. I., CANIZALES-RODRÍGUEZ, D. F., MÁRQUEZ-RÍOS, E., MONTOYA-CAMACHO, N., RUIZ-CRUZ, S., & OCAÑO-HIGUERA, V. M. (2014). Postmortem biochemical changes and evaluation of the freshness in the muscle of tilapia (Oreochromis niloticus) during the storage in ice. Journal of Fisheries and Aquatic Science, 9(6), 435–445. https://doi.org/10.3923/jfas.2014.435.445
DASKALOVA, A. (2019). Farmed fish welfare: Stress, post-mortem muscle metabolism, and stress-related meat quality changes. International Aquatic Research, 11, 113–124. https://doi.org/10.1007/s40071-019-0230-0
Food and Agriculture Organization of the United Nations. (2024). The State of World Fisheries and Aquaculture 2024: Blue transformation in action. https://doi.org/10.4060/cd0683en
HEMATYAR, N., IMENTAI, A., KŘIŠŤAN, J., WAGHMARE, S. G., & POLICAR, T. (2022). Considering two aspects of fish welfare on African catfish (Clarias gariepinus) fillet throughout postmortem condition: Efficiency and mechanisms. Foods, 11(24), 4090. https://doi.org/10.3390/foods11244090
HURLBERT, S. H. (1984). Pseudoreplication and the design of ecological field experiments. Ecological Monographs, 54(2), 187–211. https://doi.org/10.2307/1942661
HUSS, H. H. (1995). Quality and quality changes in fresh fish (FAO Fisheries Technical Paper No. 348). Food and Agriculture Organization of the United Nations.
LAMBOOIJ, E., KLOOSTERBOER, R. J., GERRITZEN, M. A., & VAN DE VIS, J. W. (2006). Assessment of electrical stunning in fresh water of African catfish (Clarias gariepinus) and chilling in ice water for loss of consciousness and sensibility. Aquaculture, 254, 388–395. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2005.10.027
LE, T. T., NGUYEN, H. T., & PHAM, M. A. (2020). Rigor mortis development and effects of filleting conditions on the quality of Tra catfish (Pangasius hypophthalmus) fillets. Journal of Food Science and Technology, 57(4), 1320–1330. https://doi.org/10.1007/s13197-019-04166-x
MONTOYA-CAMACHO, N., MÁRQUEZ-RÍOS, E., CASTILLO-YÁÑEZ, F. J., RUÍZ-CRUZ, S., CÁRDENAS-LÓPEZ, J. L., ARVIZU-FLORES, A. A., TORRES-ARREOLA, W., & OCAÑO-HIGUERA, V. M. (2020). Efecto de la temperatura de almacenamiento sobre el rigor mortis del músculo de tilapia (Oreochromis niloticus). Biotecnia, 22(2), 88–93. https://doi.org/10.18633/biotecnia.v22i2.1249
OLIVEIRA FILHO, P. R. C., OLIVEIRA, C. A. F., SOBRAL, P. J. A., BALIEIRO, J. C. C., NATORI, M. M., & VIEGAS, E. M. M. (2015). How stunning methods affect the quality of Nile tilapia meat. CyTA - Journal of Food, 13(1), 56–62. https://doi.org/10.1080/19476337.2014.911211
POLI, B. M., PARISI, G., SCAPPINI, F., & ZAMPACAVALLO, G. (2005). Fish welfare and quality as affected by pre-slaughter and slaughter management. Aquaculture International, 13, 29–49. https://doi.org/10.1007/s10499-004-9035-1
PRESENZA, L. S., SANTOS, A. S., SILVA, A. C. F., BERNABÉ, C. V., FERREIRA, J. V. F., DAYRELL, L. C., GARCIA, R. C. P., LAVANDER, H. D., & MINOZZO, M. G. (2021). Rigor index of juvenile cobia (Rachycentron canadum): Study with anesthesia (eugenol) and hypothermia. International Journal of Advanced Engineering Research and Science, 8(4), 123–127. https://doi.org/10.22161/ijaers.84.14
PRESTES DOS SANTOS, S., DA SILVA, M. I., GODOY, A. C., DE ALMEIDA BANHARA, D. G., GOES, M. D., SOUZA DOS REIS GOES, E., & HONORATO, C. A. (2024). Respiratory and muscular effort during pre-slaughter stress affect Nile tilapia fillet quality. PLOS ONE, 19(7), e0306880. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0306880
ROTH, B., SLINDE, E., & ARILDSEN, J. (2006). Pre or post mortem muscle activity in Atlantic salmon (Salmo salar): The effect on rigor mortis and the physical properties of flesh. Aquaculture, 257, 504–510. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2005.10.021
SUNDELL, E., BRIJS, J., & GRÄNS, A. (2024). The quest for a humane protocol for stunning and killing Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture, 593, 741317. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2024.741317
WATABE, S., USHIO, H., IWAMOTO, M., YAMANAKA, H., & HASHIMOTO, K. (1989). Temperature-dependency of rigor-mortis of fish muscle: Myofibrillar Mg2+-ATPase activity and Ca2+ uptake by sarcoplasmic reticulum. Journal of Food Science, 54(5), 1107–1110. https://doi.org/10.1111/j.1365-2621.1989.tb05933.x
YANG, X., MEI, J., & XIE, J. (2024). Effects of different slaughtering methods on the biochemical characteristics and quality changes of tilapia (Oreochromis niloticus) during cold storage. Food Chemistry: X, 24, 101951. https://doi.org/10.1016/j.fochx.2024.101951
YASMIN, L., KAMAL, M., AHMED, S. A. K., AZIMUDDIN, K. M., KHAN, M. N. A., & ISLAM, M. N. (2001). Studies on the post-mortem changes in genetically improved farmed tilapia (Oreochromis niloticus) during ice storage. Pakistan Journal of Biological Sciences, 4(9), 1144–1148.
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